Особенности питания мидии Mytilus galloprovincialis Lam., культивируемой в прибрежье г. Севастополя
##plugins.themes.bootstrap3.article.main##
Google Scholar
##plugins.themes.bootstrap3.article.details##
Аннотация
Устойчивость марикультуры, как активно развивающейся отрасли сельского хозяйства, зависит от обеспеченности моллюсков пищей. Наличие и доступность пищи являются одними из основных факторов, лимитирующих рост и размножение двустворчатых моллюсков. Наиболее ценной частью взвешенного вещества для питания моллюсков-фильтраторов являются микроводоросли. Взаимодействие популяций мидий (как естественных, так и искусственных) и фитопланктона в качестве источника пищи известно давно. Установлено, что мидии, питающиеся микроводорослями, имеют более высокие темпы роста и быстрое развитие гонад по сравнению с особями, которые питаются детритом. Целью настоящей работы является сравнительный анализ состава фитопланктона в районе размещения марихозяйства (Севастополь, Чёрное море) и содержания желудков культивируемых мидий Mytilus galloprovincialis. Исследования проведены с февраля по август 2020 г. в районе мидийной фермы, расположенной на внешнем рейде Севастополя. Видовой состав и количественные характеристики фитопланктона в воде фермы типичны для прибрежных акваторий Крыма. Сходство состава микроводорослей в пробах воды и содержимом желудков мидий было максимальным в феврале (72 %), весной и летом не превышало 42 %. В пищевом комке мидий наиболее распространены диатомовые ― 27 видов, 11 видов относятся к динофитовым водорослям. Наиболее распространённым видом в желудках мидий была динофлагеллята Prorocentrun micans. Наряду с планктонными видами отмечено значительное количество бентосных диатомовых водорослей, которые не были встречены в планктоне. Подтверждена избирательность при питании культивируемых мидий микроводорослями. Виды микрофитов, продуцирующих токсины, отмечены в желудках мидий и в воде. Поскольку рост и размножение двустворчатых моллюсков зависят от качества их рациона, для повышения эффективности морского фермерства необходимо учитывать условия, при которых культивируемые моллюски имеют доступную пищу для максимального генеративного и соматического роста.
Авторы
Библиографические ссылки
Губанов В. И., Мальченко Ю. А., Куфтаркова Е. А., Ковригина Н. П. Диагноз современного состояния вод Севастопольского взморья (Чёрное море) по результатам мониторинга гидрохимических характеристик // Экологическая безопасность прибрежной и шельфовой зон и комплексное использование ресурсов шельфа. – 2004. – № 10. – С. 141–148.
Девяткин В. Г., Митропольская И. В. Встречаемость видов водорослей как показатель биологического разнообразия альгоценозов // Динамика разнообразия гидробионтов во внутренних водоемах России / Ин-т биологии внутр. вод им. И. Д. Папанина ; под ред. В. Г. Папченкова. – Ярославль : Изд-во Ярослав. гос. техн. ун-та, 2002. – С. 5–22.
Иванов В. Н., Холодов В. И., Сеничева М. И., Пиркова А. В., Булатов К. В. Биология культивируемых мидий / АН СССР, Ин-т биологии юж. морей им. А. О. Ковалевского. – Киев : Наукова думка, 1989. – 100 с.
Киселев И. А. Определитель по фауне СССР. Панцирные жгутиконосцы (Dinoflagellata) морей и пресных вод СССР. – Москва ; Ленинград : Изд-во АН СССР, 1950. – 280 с. – (Определители по фауне СССР, издаваемые Зоологическим институтом Академии наук СССР ; 33).
Крахмальный А. Ф. Динофитовые водоросли Украины (иллюстрированный определитель). – Киев : Альтерпрес, 2011. – 444 с.
Куфтаркова Е. А., Губанов В. И., Ковригина Н. П., Еремин И. Ю., Сеничева М. И. Экологическая оценка современного состояния вод в районе взаимодействия Севастопольской бухты с прилегающей частью моря // Морской экологический журнал. – 2006. – Т. 5, № 1. – С. 72–91.
Лях А. М., Брянцева Ю. В. Компьютерная программа для расчёта основных параметров фитопланктона // Экология моря. – 2001. – Вып. 58. – C. 87–90.
Поспелова Н. В., Трощенко О. А., Субботин А. А. Изменчивость кормовой базы двустворчатых моллюсков в двухлетнем цикле выращивания на мидийно-устричной ферме (Чёрное море, Голубой залив) // Учёные записки Крымского федерального университета имени В. И. Вернадского. Сер.: Биология. Химия. – 2018. – Т. 4 (70), № 4. – С. 148–164.
Прошкина-Лавренко А. И. Диатомовые водоросли планктона Чёрного моря. – Москва ; Ленинград : Издво АН СССР, 1955. – 224 с.
Прошкина-Лавренко А. И. Диатомовые водоросли планктона Чёрного моря. – Москва ; Ленинград : Издво АН СССР, 1963. – 244 с.
Рябушко Л. И. Потенциально опасные микроводоросли Азово-Черноморского бассейна / НАН Украины, Ин-т биологии юж. морей им. А. О. Ковалевского. – Севастополь : ЭКОСИ-Гидрофизика, 2003. – 288 с. 12. Рябушко Л. И., Поспелова Н. В., Балычева Д. С., Ковригина Н. П., Трощенко О. А., Капранов С. В. Исследования микрофитобентоса эпизоона Мytilus galloprovincialis Lam., фитопланктона и гидрологогидрохимических характеристик акватории мидийной фермы (Севастополь, Чёрное море) // Морской биологический журнал. – 2017. – Т. 2, № 4. – С. 67–83. – https://doi.org/10.21072/mbj.2017.02.4.07
Сеничева М. И. Характеристика фитопланктона как объекта питания Mytilus galloprovincialis Lam. в районе марихозяйства бухты Ласпи // Экология моря. – 1990. – Вып. 36. – С. 7–15.
Сеничева М. И. Кормовая база мидий, динамика фитопланктона в районах размещения ферм // Марикультура мидий на Чёрном море / НАН Украины, Ин-т биологии юж. морей им. А. О. Ковалевского ; [ред. В. Н. Иванов]. – Севастополь : ЭКОСИ Гидрофизика, 2007. – С. 94–107.
Цихон-Луканина Е. А. Трофология водных моллюсков. – Москва : Наука, 1987. – 175 с.
Шитиков В. К., Розенберг Г. С., Зинченко Т. Д. Количественная гидроэкология: методы системной идентификации / Ин-т экологии Волжского бассейна РАН. – Тольятти : ИЭВБ РАН, 2003. – 463 с.
Arapov J., Ezgeta-Balic D., Peharda M., Glandanl Z. N. Bivalve feeding ― how and what they eat? // Ribarstvo. – 2010. – Vol. 68, iss. 3. – P. 105–116.
Besiktepe S., Ryabushko L., Ediger D., Yimaz D., Zenginer A., Ryabushko V., Lee R. Domoic acid production by Pseudo-nitzschia calliantha Lundholm, Moestrup et Hasle (Bacillariophyta) isolated from the Black Sea // Harmful Algae. – 2008. – Vol. 7, iss. 4. – Р. 438–442. – https://doi.org/10.1016/j.hal.2007.09.004
González-Gil S., Pizarro G., Paz B., Velo-Suarez L., Reguera B. Considerations on the toxigenic nature and prey sources of Phalacroma rotundatum // Aquatic Microbial Ecology. – 2011. – Vol. 64, no. 2. – P. 197–203. – https://doi.org/10.3354/ame01523
Grzebyk D., Denardou A., Berland B., Pouchus Y.F. Evidence of a new toxin in the redtide dinoflagellate Prorocentrum minimum // Journal of Plankton Research. – 1997. – Vol. 19, iss. 8. – Р. 1111–1124. – https://doi.org/10.1093/plankt/19.8.1111
Heil C. A., Glibert P. M., Fan C. Prorocentrum minimum (Pavillard) Schiller. A review of a harmful algal bloom species of growing worldwide importance // Harmful Algae. – 2005. – Vol. 4, iss. 3. – P. 449–470. – https://doi.org/10.1016/j.hal.2004.08.003
Kat M. Dinophysis acuminata blooms, the distinct cause of Dutch mussel poisoning // Toxic dinoflagellates : Proceedings of the Third International Conference on Toxic Dinoflagellates, St. Andrews, New Brunswick, Canada, June 8-12, 1985 / Eds: D. M. Anderson, A. W. White, D. G. Baden. – New York, NY, USA : Elsevier, 1985. – P. 73–78.
Morioka H., Kasai A., Miyake Y., Kitagawa T., Kimura S. Food composition for Blue mussels (Mytilus edulis) intheMenaiStrait,UK,basedonphysicalandbiochemicalanalyses//JournalofShellfishResearch.–2017.– Vol. 36, iss. 3. – P. 659–668. – https://doi.org/10.2983/035.036.0315
Phalacroma rotundatum (Claparéde & Lachmann) Kofoid & J.R.Michener, 1911 // IOC-UNESCO Taxonomic Reference List of Harmful Micro Algae / Eds: Ø. Moestrup, R. Akselmann-Cardella, C. Churro, S. Fraga, M. Hoppenrath, M. Iwataki, J. Larsen, N. Lundholm, A. Zingone (2009 onwards). – URL: http://www.marinespecies.org/hab/aphia.php?p=taxdetails&id=156505 [accessed on: 16.03.2021].
Prato E., Danieli A., Maffia M., Biandolino F. Lipid and fatty acid compositions of Mytilus galloprovincialis cultured in the Mar Grande of Taranto (Southern Italy): feeding strategies and trophic relationships // Zoological Studies. – 2010. – Vol. 49, no. 2. – P. 211–219.
Rouillon G., Guerra Rivas J., Ochoa N., Navarro E. Phytoplankton composition of the stomach contents of the mussel Mytilus edulis L. from two populations: comparison with its food supply // Journal of Shellfish Research. – 2005. – Vol. 24, no. 1. – P. 5–14. – https://doi.org/10.2983/07308000(2005)24[5:PCOTSC]2.0.CO;2
Shumway S., Cucci T., Newell R., Yentsch C. Particle selection, ingestion, and absorption in filter-feeding bivalves // Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. – 1985. – Vol. 91, iss. 1/2. – P. 77–92. – https://doi.org/10.1016/0022-0981(85)90222-9
Sidari I., Nichetto P., Cok S., Sosa S., Tubaro A., Honsell G., Della Loggia R. Phytoplankton selection by mussel, and diarrhetic shellfish poisoning // Marine Biology. – 1998. – Vol. 131. – P. 103–111. – https://doi.org/10.1007/s002270050301
Strohmeier T., Duinker A., Strand O., Aure J. Temporal and spatial variation in food availability and meat ratio in a longline mussel farm (Mytilus edulis) // Aquaculture. – 2008. – Vol. 276, iss. 1/4. – P. 83–90. – https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2008.01.043
Tomas C. R. Marine Phytoplankton. A Guide to naked flagellates and Coccolithophorids / Ed. C. R. Tomas. – San Diego : Academic Press Inc., 1993. – 263 p.
Vershinin A. O., Orlova T. Y. Toxic and harmful algae in the coastal waters of Russia // Oceanology. – 2008. – Vol. 48, iss. 4. – P. 524–537. – https://doi.org/10.1134/S0001437008040085
Vlamis A., Katikou P., Rodriguez I., Rey V., Alfonso A., Papazachariou A., Zacharaki T., Botana A. M., Botana L. M. First detection of tetrodotoxin in Greek shellfish by UPLC-MS/MS potentially linked to the presence of the dinoflagellate Prorocentrum minimum // Toxins. – 2015. – Vol. 7, iss. 5. – Р. 1779–1807. – https://doi.org/10.3390/toxins7051779
Wikfors G. H. A review and new analysis of trophic interactions between Prorocentrum minimum and clams, scallops, and oysters // Harmful Algae. – 2005.– Vol. 4, iss. 3. – P. 585–592. – https://doi.org/10.1016/j.hal.2004.08.008
Xu Q., Yang H. Food sources of three bivalves living in two habitats of Jiaozhou Bay (Qingdao, China): Indicated by lipid biomarkers and stable isotope analysis // Journal of Shellfish Research. – 2007. – Vol. 26, no. 2. – P. 1–7. – https://doi.org/10.2983/0730-8000(2007)26[561:FSOTBL]2.0.CO;2
Yahel G., Marie D., Beninger P. G., Eckstein S., Genin A. In situ evidence for precapture qualitative selection in the tropical bivalve Lithophaga simplex // Aquatic Biology. – 2009. – Vol. 6. – P. 235–246. – https://doi.org/10.3354/ab00131